螢光探針取用 10 ml，建議使用 22x22 mm 大小的蓋玻片來覆蓋樣本範圍 ; 

取用 8 ml 則是建議使用 18x18 mm大小的蓋玻片來覆蓋 ;

取用 5 ml 則是建議使用 12 mm 圓形蓋玻片來覆蓋 ;

請依照所需觀察的組織範圍來調整螢光探針的使用量。

本公司螢光探針片段大小設計為 50bp~400bp，這樣的螢光探針不僅容易進入細胞核，並且對於細胞基因的表現具有專一性鍵結。

石蠟包埋組織切片，冷凍切片，細胞染色體玻片。

 建議預先觀察細胞生長曲線，在正確的生長時間加入使細胞停滯在分裂中期的藥物。

 染色體糾結一起，不夠散開：除了加入固定液時速度太快而缺乏打散細胞之外，以及低滲溶液作用時間不足的因素之外，建議調整滴片時環境溫度和溼度 ; 另外，在滴上細胞於載玻片之前，可預先加上一滴新鮮固定液，再立刻滴上已經過固定的細胞懸浮液，先前滴上固定液向外蒸發過程中，可以配合輕輕搖晃玻片，順勢將細胞帶開幫助減少染色體糾結 ; 滴片高度除了難以控制滴片精準度之外，對於染色體的散開幫助較小。

 可能是變性時間溫度過高，時間過長。

 用於使細胞停滯在分裂中期的藥物濃度不足或者是藥物作用時間太短，使得染色體形態過長 ; 相反地 ， 藥物濃度過高或者是藥物作用時間太長 ，使得染色體形態過短而增加了辨認染色體的困難性。

 離心細胞時轉速過高，還有使用低滲溶液(hypotonic buffer)時的溫度過高，作用時間過久都是原因之一，請調整實驗的條件。

 要改善細胞碎片太多的問題，建議於製作細胞玻片步驟中的滴片之前 ，務必利用固定液清洗多次以幫助得到乾淨的細胞背景，特別是使用全血培養淋巴球細胞的方法， 雖然清洗過程會造成細胞流失 ，但是相對地細胞碎片也會減少 ; 基本上一般染色體玻片或細胞玻片實驗時，不需要經過酵素消化即可進行 FISH實驗 ，但是如果細胞質殘留的部份太多，可以選擇酵素消化處理幫助去除多餘細胞質。

 不建議，通常結合上染色體細胞的螢光探針，即使用變性溶液(denature solution) 在高溫下可以去除大部份螢光探針，仍然會有少部份無法完全去除而變成干擾的背景 ; 但是如果使用相同的螢光探針檢測組，是可以在相同位置的石蠟包埋樣本進行FISH實驗。