荧光探针取用 10 ml，建议使用 22´22 mm 大小的盖玻片来覆盖样本范围 ; 

取用 8 ml 则是建议使用 18´18 mm大小的盖玻片来覆盖 ;

取用 5 ml 则是建议使用 12 mm 圆形盖玻片来覆盖 ;

请依照所需观察的组织范围来调整荧光探针的使用量。

 本公司荧光探针片段大小设计为 50bp~400bp，这样的荧光探针不仅容易进入细胞核，并且对于细胞基因的表现具有特异性。

 石蜡包埋组织切片，冷冻切片，细胞染色体玻片。

 建议预先观察细胞生长曲线，在正确的生长时间加入使细胞停滞在分裂中期的药物。

 染色体纠结一起，不够散开：除了加入固定液时速度太快而缺乏打散细胞之外，以及低渗溶液作用时间不足的因素之外，建议调整滴片时环境温度和湿度 ; 另外，在滴上细胞于载玻片之前，可预先加上一滴新鲜固定液，再立刻滴上已经过固定的细胞悬浮液，先前滴上固定液向外蒸发过程中，可以配合轻轻摇晃玻片，顺势将细胞带开帮助减少染色体纠结 ; 滴片高度除了难以控制滴片精准度之外，对于染色体的散开帮助较小。

 染色体纠结一起，不够散开：除了加入固定液时速度太快而缺乏打散细胞之外，以及低渗溶液作用时间不足的因素之外，建议调整滴片时环境温度和湿度 ; 另外，在滴上细胞于载玻片之前，可预先加上一滴新鲜固定液，再立刻滴上已经过固定的细胞悬浮液，先前滴上固定液向外蒸发过程中，可以配合轻轻摇晃玻片，顺势将细胞带开帮助减少染色体纠结 ; 滴片高度除了难以控制滴片精准度之外，对于染色体的散开帮助较小。

 可能是变性时间温度过高，时间过长。

 用于使细胞停滞在分裂中期的药物浓度不足或者是药物作用时间太短，使得染色体形态过长 ; 相反地 ， 药物浓度过高或者是药物作用时间太长 ，使得染色体形态过短而增加了辨认染色体的困难性。

 离心细胞时转速过高，还有使用低渗溶液(hypotonic buffer)时的温度过高，作用时间过久都是原因之一，请调整实验的条件。

 要改善细胞碎片太多的问题，建议于制作细胞玻片步骤中的滴片之前 ，务必利用固定液清洗多次以帮助得到干净的细胞背景，特别是使用全血培养淋巴球细胞的方法， 虽然清洗过程会造成细胞流失 ，但是相对地细胞碎片也会减少 ; 基本上一般染色体玻片或细胞玻片实验时，不需要经过酶消化即可进行 FISH实验 ，但是如果细胞质残留的部份太多，可以选择酶消化处理帮助去除多余细胞质。